考馬斯亮藍染色
考馬斯亮藍有G250和R250兩種。其中考馬斯亮藍G250由于與蛋白質(zhì)的結(jié)合反應(yīng)十分迅速，常用來作為蛋白質(zhì)含量的測定?？捡R斯亮藍R250與蛋白質(zhì)反應(yīng)雖然比較緩慢，但是可以被洗脫下去，所以可以用來對病理組織內(nèi)的蛋白質(zhì)進行染色。
相關(guān)實驗
實驗承諾函
咨詢記錄
技術(shù)文章
城市
時間
河北省滄州市吳橋縣
2025-05-09 23:51:34
江蘇省常州市
2025-05-09 23:43:25
浙江省寧波市
2025-05-09 19:42:50
浙江省溫州市
2025-05-09 17:28:14
浙江省金華市義烏市
2025-05-09 17:27:44
江蘇省常州市
2025-05-09 15:42:34
浙江省麗水市
2025-05-09 15:39:12
浙江省寧波市
2025-05-09 15:28:57
福建省廈門市
2025-05-09 11:42:20
江蘇省常州市
2025-05-09 08:51:46
甲苯胺藍染色試劑盒推薦
2025-02-14 17:34:00
甲苯胺藍染色新視角
2025-02-14 14:53:48
優(yōu)化甲苯胺藍染色流程【技術(shù)推薦】
2025-02-13 16:37:14
甲苯胺藍染色染液配制方法
2025-02-13 13:30:10
甲苯胺藍染色步驟
2025-02-12 17:32:25
甲苯胺藍染色原理
2025-02-11 14:52:14
TTC染色注意事項
2025-02-08 16:15:23
TTC染色實驗：揭秘細胞活性的可視化過程
2025-02-08 14:50:36
TTC染色常見問題解答
2025-02-07 15:37:49
TTC染色在醫(yī)學(xué)研究中的意義
2025-02-06 14:25:34
TTC染色詳細計算分析過程
2025-02-05 14:00:44
TTC染色檢測種子生存能力方法
2025-01-24 16:32:08
TTC染色劑配制
2025-01-24 11:39:42
TTC染色步驟+數(shù)據(jù)分析
2025-01-23 13:51:28
TTC染色原理
2025-01-23 11:35:29
TSA多色免疫熒光最新研究進展
2025-01-15 16:57:37
TSA多色免疫熒光實驗注意事項
2025-01-15 13:24:28
TSA多色免疫熒光實驗過程中的問題以及解決方法
2025-01-14 16:47:49
TSA多色免疫熒光在科研中的應(yīng)用《科研探索中的新利器》
2025-01-10 17:49:14
TSA多色免疫熒光染色方法，輕松掌握多色染色技巧
2025-01-10 16:08:14
TSA多色免疫熒光與單色免疫熒光的區(qū)別
2025-01-10 13:47:42
TSA多色免疫熒光試劑推薦
2025-01-09 14:04:28
TSA多色免疫熒光結(jié)果解讀
2025-01-07 14:29:01
TSA多色免疫熒光技術(shù)教程
2025-01-06 17:02:10
TSA多色免疫熒光原理介紹
2025-01-06 14:01:09
考馬斯亮藍染色注意事項
2024-12-31 17:01:39
考馬斯亮藍染色液配方 輕松掌握實驗技巧
2024-12-31 13:59:49
考馬斯亮藍染色液配方 輕松掌握實驗技巧
2024-12-31 13:59:49
考馬斯亮藍染色常見問題解析
2024-12-30 16:58:42
如何正確進行考馬斯亮藍染色？看這里就夠了
2024-12-30 14:47:25
考馬斯亮藍染色后，如何保存凝膠？
2024-12-30 11:46:25
考馬斯亮藍染色原理與傳統(tǒng)染色
2024-12-26 15:44:07
考馬斯亮藍測蛋白濃度步驟
2024-12-26 14:12:43
考馬斯亮藍染色步驟全解析
2024-12-25 17:04:32
考馬斯亮藍染色原理
2024-12-25 15:55:00
免疫熒光染色常見問題以及解決方法
2024-07-17 15:28:48
免疫熒光染色實驗儀器
2024-07-16 11:45:51
免疫熒光染色與流式細胞儀的比較
2024-07-15 11:51:40
免疫熒光染色與免疫組化的比較
2024-07-12 15:31:29
免疫熒光染色封片技巧
2024-07-10 16:46:43
免疫熒光染色實驗所需材料【輕松掌握實驗精髓】
2024-07-10 11:30:18
免疫熒光染色實驗方法【深入解析與操作指南】
2024-07-09 18:00:27
免疫熒光染色步驟
2024-07-08 16:05:38
免疫熒光染色技術(shù)原理【小白到大神】
2024-07-08 14:40:21
透射電鏡在生物技術(shù)中的應(yīng)用
2024-07-03 17:27:44
如何選擇透射電鏡實驗設(shè)備？專業(yè)指南
2024-07-03 11:42:54
透射電鏡與掃描電鏡的區(qū)別
2024-07-01 11:50:07
透射電鏡觀察什么？
2024-06-27 10:59:36
透射電鏡的結(jié)構(gòu)與成像原理探究
2024-06-26 17:04:16
lncRNA實驗教程
2024-06-21 16:45:47
冰凍切片實驗注意事項
2024-06-18 16:01:24
冰凍切片實驗技巧分享
2024-06-13 16:00:48
冰凍切片實驗?zāi)康?/p>
2024-06-12 17:47:20
冰凍切片實驗步驟
2024-06-12 11:05:47
冰凍切片實驗原理以及應(yīng)用
2024-06-11 15:52:55
CCK8檢測實驗報告（一）
2024-05-31 11:06:50
PAS糖原染色常見問題及解決方案
2024-05-29 10:29:11
PAS染色臨床應(yīng)用
2024-05-27 15:28:28
PAS染色實驗注意事項
2024-05-27 14:03:53
PAS染色實驗材料有哪些？【組織染色實驗外包】
2024-05-24 11:43:54
PAS染色結(jié)果解讀
2024-05-23 17:12:34
PAS染色的實驗步驟全攻略：從入門到精通
2024-05-22 18:02:19
如何獲得更清晰的染色效果？【PAS染色技巧分享】
2024-05-22 11:03:29
PAS染色實驗報告【小鼠心肌】
2024-05-21 18:00:23
PAS檢測實驗報告【小鼠腎】
2024-05-21 17:27:03
PAS染色實驗原理介紹
2024-05-21 16:37:55
MASSON（馬松）染色實驗過程中常見問題和解決方法
2024-05-17 16:51:18
MASSON（馬松）染色實驗技術(shù)注意事項【新手必看】
2024-05-17 15:50:51
MASSON（馬松）染色實驗中染液的順序
2024-05-16 17:27:02
MASSON（馬松）染色實驗?zāi)康摹窘M織染色外包】
2024-05-15 17:26:27
MASSON（馬松）染色原理陽性意義
2024-05-15 16:40:13
MASSON（馬松）染色結(jié)果怎么看纖維化？
2024-05-14 15:30:42
MASSON（馬松）染色方法及其在實驗室的應(yīng)用
2024-05-13 16:01:00
Masson染色實驗報告分析
2024-05-13 11:52:02
如何進行MASSON染色？專業(yè)教程與技巧分享
2024-05-11 15:52:01
深入了解MASSON染色：原理、步驟與實例
2024-05-11 14:38:33
TUNEL染色實驗過程中的常見問題與解決方法分析
2024-05-09 15:09:25
TUNEL染色實驗中的質(zhì)量控制措施
2024-05-08 17:47:16
TUNEL染色實驗與熒光顯微鏡
2024-05-07 17:03:53
TUNEL染色實驗與細胞凋亡機制
2024-05-07 14:37:14
TUNEL染色實驗在凋亡檢測中的優(yōu)勢與局限性
2024-04-29 17:52:55
Tunnel染色實驗注意事項【新手必看指南】
2024-04-26 14:08:38
TUNEL染色實驗試劑選擇和配置方法
2024-04-24 14:32:10
如何進行TUNEL染色陽性對照實驗？
2024-04-23 15:04:07
TUNEL檢測實驗報告（三）
2024-04-23 11:23:41
TUNEL檢測實驗報告（二）
2024-04-22 15:05:35
TUNEL檢測實驗報告（一）
2024-04-22 13:44:20
TUNEL染色實驗原理和實驗操作技巧【詳細篇】
2024-04-22 11:25:02
TUNEL染色原理介紹【組織染色】
2024-04-19 17:10:01
病理組織染色實驗大全（二）
2024-04-08 16:24:35
激光共聚焦和熒光共聚焦的區(qū)別
2024-03-25 17:33:25
激光共聚焦實驗?zāi)康?/p>
2024-03-25 16:10:39
激光共聚焦結(jié)果分析
2024-03-21 16:02:38
激光共聚焦實驗步驟詳解
2024-03-21 13:03:58
原位雜交方法【總結(jié)】
2024-03-19 14:11:07
原位雜交實驗操作細節(jié)有哪些？
2024-03-15 16:47:17
原位雜交實驗的應(yīng)用
2024-03-15 15:04:52
原位雜交實驗分析——原位雜交實驗外包
2024-03-15 11:48:36
原位雜交目的
2024-03-14 13:51:45
原位雜交檢測實驗報告（五）
2024-03-13 16:42:10
實驗介紹
【實驗原理】
考馬斯亮藍在游離狀態(tài)下呈紅色，最大光吸收在488nm；當它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)榍嗌?，蛋白質(zhì)-色素結(jié)合物在595nm波長下有最大光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比，因此可用于蛋白質(zhì)的定量測定。
【實驗方法】
Step1：石蠟切片常規(guī)操作脫蠟水化；
Step2：切片復(fù)水后經(jīng)過7%(v/v)醋酸1~2min；
Step3：放入考馬斯藍R染色液中染色15min；
Step4：自水清洗5min后經(jīng)過蒸餾水；
Step5：脫水：依次經(jīng)85%、95%Ⅰ、95%Ⅱ各10秒，無水乙醇Ⅰ30s、無水乙醇Ⅱ1min；
Step6：透明：經(jīng)二甲苯Ⅰ1min、二甲苯Ⅱ2min；
Step7：中性樹膠固封，鏡檢。
案例展示
技術(shù)總結(jié)
【常見問題】
1、染色時間過長或過短導(dǎo)致的染色過深或過淺；
2、分化液分化時間過長，導(dǎo)致組織染色陽性過淺；
3、特殊組織如植物組織較脆，易出現(xiàn)掉片。
【注意事項】
1、控制染色時間，保證染色不至于過深或過淺，必要時可在顯微鏡下觀察控制染色時間；
2、分化時間不易過長，保證陽性顯色清晰可見；
3、特殊組織切片時應(yīng)控制切片厚度以及攤片時間，減少掉片風險。
送檢與交付標準
| 樣品類型 | 樣品需求 | 保存條件 | 運輸條件 | 備注 |
|---|---|---|---|---|
| 新鮮組織 | 新鮮取材組織，用 PBS清洗干凈血液等，立即-80℃保存； | -80℃ | 干冰 | 所有樣本均須有唯一標記，且標記清晰可識。 |
| 一般固定組織 | 一般組織體積不超過2cmX2cmX0.5cm，固定時盡量保持組織的原有形態(tài)并清理干凈血液及多余部分，如腸道內(nèi)容物；固定液體積為組織大小的10倍以上，容器足夠容納組織不使其擠壓變形。標注好固定液類型和固定時長； | 常溫 | 常溫 | |
| 特殊固定組織 | 睪丸、眼球、脊髓、肌肉等組織：推薦使用對應(yīng)的特殊固定液進行固定，以保證固定效果。如Bouin液，適用于睪丸組織、皮膚組織及眼球的固定； | |||
| 組織蠟塊 | 組織由標準的石蠟包埋盒包埋（尺寸為30*24*7mm），石蠟與組織要均勻接合，不能有裂痕；蠟塊厚度根據(jù)所需切片的數(shù)量而定，有效厚度至少要超過0.1cm。盡量提供半年內(nèi)的組織蠟塊，超過半年的蠟塊抗原可能丟失，做免疫組化可能出現(xiàn)檢測不到蛋白； | 常溫 | 常溫 | |
| 組織切片 | 需用防脫載玻片進行撈片，并注明切片厚度、已烤片溫度與時間，組織應(yīng)在靠近切片下端 1/3 處； | 4℃ | 冰袋 | |
| 細胞爬片 | 使用 12 孔板或 24孔板專用細胞爬片，細胞爬片經(jīng)固定后用 PBS 洗滌 2~3 次，保存在 PBS 中，用封口膜密封孔板。每個爬片在孔板蓋上應(yīng)有唯一的標記，并有電子版的分組信息，以防標記在運輸途中模糊； | 常溫 | 常溫 | |
| 植物樣本 | 新鮮組織FAA固定，木質(zhì)化程度不高；對于較薄的葉片，如果要求平行葉片切片，難以保證切完整；根莖要求直徑>1mm； | 常溫 | 常溫 | |
| 抗體 | 保存抗體的抗體管上應(yīng)有能夠識別此抗體的標記，并附帶說明書，抗體的量應(yīng)大于實驗所需的量。組織切片、組織芯片按稀釋后 100μl 一張切片計算抗體用量， 24 孔板細胞爬片圓形蓋玻片按稀釋后 200μl一張計算抗體用量，12 孔板細胞爬片圓形蓋玻片按稀釋后 400μl 一張計算抗體用量。 | -20℃ | 冰袋或干冰 |
電話：400-691-6686
在線時間：8:00-24:00
微信關(guān)注公眾號
湘公網(wǎng)安備