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    小鼠腸炎模型是研究腸炎發(fā)病機制、評估藥物療效的重要工具，普拉特澤生物承接小鼠腸炎模型等動物實驗相關服務上萬例，積累了操作大量經(jīng)驗，可承接動物實驗外包服務。
下面我們進入正題——幾種常見的小鼠腸炎模型構建方法的詳解：
一、DSS誘導法

?DSS溶液配制?：

●稱取一定量的DSS，使用水溶解，配置成2%~5%（w）的DSS水溶液。DSS溶液配制好完成后可在4℃避光保存。

?造模過程?：

●將小鼠按照體重隨機分組。

●將小鼠水瓶內(nèi)的水溶液更換為DSS水溶液，按照5ml/只/天的量進行準備，隔兩天后更換新的DSS溶液（DSS給藥時為day1，在day3、day5更換DSS溶液）。

急性模型：第8天將DSS溶液更換為不含DSS的清水。

慢性模型：第8天將DSS溶液更換為不含DSS的清水，清水攝取持續(xù)14天后，重復前面的步驟2~3次。

?觀察與評估?：

●造模后持續(xù)觀察小鼠狀態(tài)，可以通過DAI評分判定小鼠成模情況。

●可以通過觀察結腸長度以及病理組織情況來評估造模效果。

二、TNBS誘導法

?試劑配制?：

●將TNBS溶于水，配制成5%TNBS（w）水溶液。

●配制橄欖油與丙酮比例為1:4（v）的均勻混合溶液，使用該混合液將5%的TNBS稀釋為1%的TNBS溶液；或者使用無水乙醇將5%的TNBS稀釋為1%的TNBS溶液。

?三、造模過程?：

●小鼠背部去毛（1.5×1.5 cm），取配制好的1%的TNBS溶液150μL均勻涂抹在去毛位置。

●七天后，小鼠麻醉后使用1ml注射器通過軟管將100μL的1%TNBS緩慢注射進入小鼠直腸內(nèi)（軟管插入直腸的長度大約4 cm），小鼠倒立保持約1分鐘。

?觀察與評估?：

●造模后持續(xù)觀察小鼠狀態(tài)，通過DAI評分判定小鼠成模情況。

四、惡唑酮誘導法

?試劑配制?：

●配制橄欖油與丙酮比例為1:4（v）的均勻混合溶液。

●使用橄欖油/丙酮混合液溶劑，稱取一定量的惡唑酮，配置成3%的惡唑酮給藥溶液；或者使用50%的無水乙醇配制得到1%的惡唑酮給藥溶液。

?造模過程?：

●小鼠背部去毛（1.5×1.5 cm），取配制好的惡唑酮溶液150μL均勻涂抹在去毛位置。

●七天后，小鼠麻醉后使用1ml注射器通過軟管將100μL的惡唑酮給藥溶液緩慢注射進入小鼠直腸內(nèi)（軟管插入直腸的長度大約4 cm），小鼠倒立保持約1分鐘。

五、觀察與評估?：

造模后持續(xù)觀察小鼠狀態(tài)，通過DAI評分判定小鼠成模情況。

四、注意事項

→在進行小鼠腸炎模型構建時，需要嚴格控制實驗條件，確保小鼠的飼養(yǎng)環(huán)境、飲食等條件一致。

→在造模過程中，需要注意操作細節(jié)，如注射器的選擇、注射速度、注射量等，以避免對小鼠造成不必要的損傷。

→在觀察與評估階段，需要采用多種指標綜合評估模型的成功與否以及炎癥的嚴重程度。

綜上所述，小鼠腸炎模型的構建方法多種多樣，每種方法都有其特定的誘導機制和適用范圍。在選擇構建方法時，需要根據(jù)研究目的和實驗條件進行綜合考慮。

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