Transwell遷移實驗報告【新人必看】
來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學(xué)整體課題外包平臺
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一、實驗?zāi)康?/strong>
通過Transwell實驗檢測Hela細胞轉(zhuǎn)染CDC20-sgRNA3或SP600125處理后其遷移能力的變化。
二、實驗樣品及分組
1.實驗樣本
備注:包括干預(yù)細胞用的相關(guān)試劑均按實驗樣品登記,每行登記一個或一組獨立樣品
2. 實驗分組
細胞:Hela
分組:sgRNA-NC、CDC20-sgRNA3
處理:Con(0.1% DMSO)、SP600125處理(20 μM,48h)
三、實驗結(jié)果
各組侵襲實驗結(jié)果圖(100×)
各組遷移實驗結(jié)果柱形圖(遷移數(shù))
四、實驗材料
1. 主要實驗儀器
五、實驗原理
陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi),形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附,再通過融合或細胞內(nèi)吞進入細胞。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前實驗室最方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法;由于脂質(zhì)體對細胞有一定的毒性,所以轉(zhuǎn)染時間一般不超過24小時。
遷移:Transwell小室上室種腫瘤細胞,下室加入FBS或某些特定的趨化因子,腫瘤細胞會向營養(yǎng)成分高的下室跑,計數(shù)進入下室的細胞量可反映腫瘤細胞的遷移能力
六、實驗步驟
1.細胞復(fù)蘇
(1) 將ddH2O預(yù)溫至37℃。
(2) 戴上手套和口罩帽子,從液氮罐中取出裝有目的細胞的凍存管(內(nèi)有1 mL細胞混合液),立即投入37℃ ddH2O中,輕搖凍存管使之在1分鐘內(nèi)快速溶解。
(3) 完全溶解后,75%酒精擦拭凍存管外壁消毒后帶進超凈臺。
(4) 在超凈臺中,在15 mL滅菌離心管中預(yù)先加入10 mL新鮮配制的培養(yǎng)基,打開凍存管,將所有凍融的細胞懸液加入該離心管中,常溫1000 rpm離心3分鐘,吸除上層的培養(yǎng)液。
(5) 1mL培養(yǎng)基重懸細胞沉淀,輕輕吹打混勻后加入T25細胞培養(yǎng)瓶中,補足培養(yǎng)基至5 mL,置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
(6) 48小時后換液,細胞融合接近80%時即可傳代。
2. 細胞培養(yǎng)
Hela細胞用含10%胎牛血清、1%雙抗的DMEM培養(yǎng)基在37℃飽和濕度、含5%CO2的孵箱中培養(yǎng)。
3. 細胞轉(zhuǎn)染及收樣
(1) 鋪板:處于對數(shù)生長期的目的細胞,胰蛋白酶消化成單細胞懸液,按實驗需要接種于6孔板(2×105個細胞/孔),根據(jù)細胞大小和形狀調(diào)整接板細胞量。
(2) 培養(yǎng):37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中過夜培養(yǎng),待細胞長至50%~60%匯合度進行轉(zhuǎn)染。
(3) 質(zhì)粒和脂質(zhì)體準備:用125μL不含血清的培養(yǎng)基孵育4μg目的片段;125μL不含血清的培養(yǎng)基孵育8μL Lipo漢恒,靜置5min;將含質(zhì)粒和含有脂質(zhì)體的培養(yǎng)基混合,混勻后室溫靜置20min。
(4) 棄去板中原有培養(yǎng)基,把混合液加入到細胞培養(yǎng)板中;4~6h后換成完全培養(yǎng)基。
(5) 繼續(xù)培養(yǎng)24-48h。
4. 遷移實驗
(1) 胰酶消化收集狀態(tài)良好的目的細胞(已轉(zhuǎn)染),制成單細胞懸液(無血清培養(yǎng)基配置,藥物處理組含藥物);上室加200μL已調(diào)節(jié)好細胞密度的細胞懸液(7×103個);下室加500μL全培養(yǎng)基(小室外,24孔板孔內(nèi);藥物處理組含藥物)。
(2) 于37℃、5% CO2細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)相應(yīng)時間;
(3) 用4%多聚甲醛室溫固定20 min,用棉簽輕柔擦拭以去除小室內(nèi)未遷移過去的細胞,注意操作以免刺穿底層聚碳酸酯膜;
(4) 在新的24孔板孔中加500μL結(jié)晶紫,室溫染色10 min;
(5) 用PBS沖洗掉小室上多余的染料,置于空氣中晾干;
(6) 100倍顯微鏡拍照,再用PS計數(shù),計算各孔穿過膜的細胞數(shù)量。
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